Fusion membranaire : protéines SNARE
Désassemblage du complexe SNARE
NSF/Sec18 (N-ethylmaleimide-Sensitive Factor)
Mécanisme du désassemblage
- Biologie cellulaire et moléculaire
- Constituants de la cellule
- Transport membranaire
- Transports membranaires sans mouvements membranaires
- Transports membranaires avec mouvements membranaires
: trafic vésiculaire
- Fusion/fission membranaire
- Fusion membranaire
- Vue d'ensemble de la fusion membranaire
- Machinerie de fusion
- Mécanisme de fusion membranaire
- Fusion des différents compartiments membranaires
- Fission membranaire
- Fusion membranaire
- Endocytose
- Voie sécrétoire
- Fusion/fission membranaire
- Protéines membranaires
- Moteurs moléculaires
- Voies de signalisation
Suite à la fusion membranaire, les complexes cis-SNARE doivent être désassemblés, afin de recycler les protéines SNARE pour un autre cycle de fusion membranaire, et ce par deux molécules
- la protéine α-SNAP/Sec17 (α-Soluble NSF Attachment Protein),
- l'AAA-ATPase NSF/Sec18 (N-ethylmaleimide-Sensitive Factor).
Pour cela, α-SNAP et NSF se lie séquentiellement au complexe SNARE pour former un supercomplexe, i.e. le supercomplexe 20S (Structural characterization of full-length NSF and 20S particles 2012).
NSF/Sec18 (N-ethylmaleimide-Sensitive Factor)
Structure générale
1. NSF (EC 3.6.4.6) est un homohexamère, dont chaque sous-unité est composée par (Mechanistic insights into the recycling machine of the SNARE complex 2015 et Recent Advances in Deciphering the Structure and Molecular Mechanism of the AAA + ATPase N-Ethylmaleimide-Sensitive Factor (NSF) 2016).
- un domaine N-terminal (résidus 1-205) qui interagit avec le complexe SNARE et α-SNAP/Sec17,
- deux domaines AAA+ (ATPases Associated with various cellular Activities) typiques appelés D1 et D2.
Ces domaines forment un anneau de trois couches.
2. Le domaine D1 semble être le moteur principal ATPasique pour le désassemblage du complexe SNARE.
L'hélice α2 du domaine D1 est courbée, une caractéristique distinctive par rapport aux hélices α2 droites trouvées dans le domaine D2 de NSF ainsi que dans les domaines D1 et D2 du parent le plus proche, VCP (Valosin-Containing Protein)/p97 (Improved Structures of Full-Length p97, an AAA ATPase: Implications for Mechanisms of Nucleotide-Dependent Conformational Change 2008 et VCP/p97-Mediated Unfolding as a Principle in Protein Homeostasis and Signaling 2018).
3. Le domaine D2, à activité ATPasique très lente, semble être une protéine d'échafaudage, i.e. principalement utilisée pour la formation et le conservation de la structure hexamérique de NSF.
NSF-ATP et
NSF-ADP
1. Les structures liées à l'ATP de la NSF sont organisées en trois couches en forme d'anneau des 6 domaines du complexe hexamèrique, i.e. 6 N, 6 D1 et 6 D2.
- L'anneau D1 possède une conformation en forme de " rondelle " fendue. L'hélice α2 du monomère F est décalée vers le bas par rapport aux hélices α2 des autres domaines.
- L'anneau D2 est plane.
2. Les structures liées à l'ADP de la NSF sont organisées aussi en trois couches en forme d'anneau avec une différence de taille, i.e. deux domaines N parmi les six (A et B) semblent être déplacés vers le coté des anneaux ATPases.
- L'anneau D1 possède une conformation en forme de " rondelle " plane ouverte, i.e. il est plus étendu et plane et laisse une grande ouverture entre les chaînes A et F. L'hélice α2 du monomère F est décalée vers le haut par rapport aux hélice α2 des autres domaines (20 Å).
- L'anneau D2 laisse un petit espace entre ces domaines qui coïncide avec l'espace de l'anneau D1.
La NSF est retrouvée sous 4 formes différentes (Mechanistic insights into the recycling machine of the SNARE complex 2015).
Interactions α-SNAP-SNARE/NSF (supercomplexe 20S)
Le complexe α-SNAP-SNARE se lie à NSF/Sec18 pour former le supercomplexe 20S.
1. Les α-SNAP se lient aux domaines N-terminaux de la NSF, i.e. servant d'adaptateurs entre la NSF et le complexe SNARE, i.e. cette liaison comprime les deux anneaux ATPases de la NSF.
2. La région la plus N-terminale des α-SNAP (E12) se lie au domaine D1, près de la bouche du pore de D1.
- Elle semble interagir avec le motif YVG de la chaîne E et chevauche les régions N-terminales du complexe SNARE des six états du 20S.
- La distance la plus courte entre les deux est d'environ 5 Å, suggérant fortement une interaction directe entre la région N-terminale du complexe SNARE et la bouche du pore du domaine NSF-D1 .
Mécanisme de
désassemblage
Plusieurs modèles de mécanismes de désassemblage sont possibles sans forcément s'exclure les uns des autres ou en se complétant vu les intrications et les interactions des différents membres du complexe 20S.
Vue d'ensemble
1. Dans les vésicules synaptiques (VS), le démontage des complexes SNARE se déroule en une seule étape dans les 100 msec dans lesquels on trouve (NSF-mediated disassembly of on- and off-pathway SNARE complexes and inhibition by complexin (2018) :
- des états désassemblés de courte durée (0,32 s) correspondent à un démontage raté ou à un réassemblage immédiat,
- des états désassemblés de longue durée (≥ 0,32 s) qui correspondent à un désassemblage complet du complexe SNARE.
2. Le désassemblage est diminuée par :
- une concentration ionique élevée,
- une réduction de la concentration d'α-SNAP qui, en plus, augmente la fréquence des états de courte durée.
- la présence de complexine (Cplx) entre en compétition avec la liaison α-SNAP/complexe SNARE, et qui peut éventuellement réguler de manière différentielle le désassemblage le complexe cis-SNARE et le complexe trans-SNARE.
3. NSF/α-SNAP désassemblerait d'autres complexes SNARE :
- le complexe t-SNARE, i.e. Stx1/SNAP-25,
- des complexes mal assemblés, comme lors de l'absence de Munc18 et Munc13, les SNARE peuvent se retrouver dans des configurations non productives, i.e. par exemple, anti-parallèles (Molecular Mechanisms of Synaptic Vesicle Priming by Munc13 and Munc18 2017).
En effet, des substrats de NSF/α-SNAP comprennent des intermédiaires d'assemblage, i.e. SNARE-complexes t-SNARE 1:1 et 2:1, oligomères de Stx1 et complexes trans-SNARE partiellement assemblés, ainsi que divers complexes SNARE mal assemblés (Multiple factors maintain assembled trans-SNARE complexes in the presence of NSF and αSNAP 2019 et Munc18-1 is crucial to overcome the inhibition of synaptic vesicle fusion by αSNAP 2019).
4. Les interactions renforcées entre α-SNAP et NSF sont plus le fait de liaisons salines que des séquences précises de résidus, ce qui explique qu'un nombre relativement restreint de NSF et de α-SNAP désassemblent un grand nombre de complexe SNARE, i.e plus de 60 chez les mammifères
- Lors de la liaison, les deux anneaux ATPases de la NSF se resserrent comme un ressort comprimé.
- Les domaines N sont immobilisés en raison des interactions salines avec les SNAP, ce qui permet de maintenir la tension mécanique.
Changements conformationnels lors de l'hydrolyse de l'ATP
L'hydrolyse de l'ATP apporte alors l'énergie pour initier les changements conformationnels.
Torsion du supercomplexe
1. Les torsions opposées des molécules α-SNAP, i.e. droite, et du faisceau de quatre hélices α du complexe SNARE, i.e. gauche dans les supercomplexes 20S suggèrent qu'une sorte de rotation est impliquée dans le processus de désassemblage du complexe SNARE,
Le supercomplexe 20S exerce un couple de force pour dérouler ou desserrer le complexe SNARE.
2. Une telle rotation a été observée dans l'anneau NSF-D1, qui tourne dans le sens antihoraire par rapport à l'anneau NSF-D2 le long de l'axe central lors de l'hydrolyse de l'ATP.
- Dans un complexe 20S, il y a six molécules NSF et quatre molécules α-SNAP, i.e. ce décalage de symétrie implique que les monomères α-SNAP individuels sont liés à un ou deux domaines N-terminaux NSF proches.
- Les six états distincts du complexe 20S pourraient présenter un modèle d'interaction unique entre les domaines α-SNAP et les domaines N-terminaux NSF, ainsi qu'une orientation unique du sous-complexe α-SNAP-SNARE par rapport à l'anneau D1D2 de NSF.
3. Une fois liés au substrat, les domaines N de la NSF deviendraient suffisamment stables par rapport à l'anneau D1, permettant ainsi la transmission du mouvement de D1 aux domaines N, et éventuellement au barillet α-SNAP puisque les domaines N de NSF interagissent directement avec les régions C-terminales des α-SNAP.
- Cette rotation du barillet α-SNAP peut générer une force mécanique le long de la direction tangente du canon cylindrique, s'appliquant principalement sur deux sites de VAMP (interactions α-SNAP/SNARE).
- Étant donné que l'extrémité N-terminale du complexe SNARE est directement ancrée à la région des pores du D1 de NSF, le couple droite généré lors de l'hydrolyse de l'ATP commencerait à se dérouler et/ou à casser le complexe SNARE hélicoïdal gauche et ainsi désassembler le complexe en protéines individuelles.
Autres mouvements possibles
1. D'autres forces peuvent agir sur les changements de l'anneau D1.
- Un mouvement vertical de 20 Å des boucles de pores pouvant appliquer une force de cisaillement au complexe SNARE, i.e. l'hélice de torsion droite du domaine D1 de la NSF-ATP se détend pour former une structure plate de la NSF-ADP,
- L'ouverture de l'anneau D1, passant d'une conformation en forme de " rondelle " fendue à celle de " rondelle " plate ouverte, appliquerait une force de traction. Les domaines D1 des chaînes A et B tournent vers l'extérieur, de sorte qu'ils pourraient être dans une position privilégiée pour le mouvement des domaines N-terminaux.
2. Le mouvement des deux domaines N (A et B) de NSF, se trouvant au bord inférieur de la rondelle fendue et qui s'inversent dans la NSF liée à l'ADP par rapport à la NSF liée à l'ATP, pourraient appliquer également une force de traction.
Prises ensemble, ces forces désassemblent complètement le complexe SNARE.
Sortie des protéines SNARE
1. L'ouverture de l'anneau D1 dans la NSF liée à l'ADP pourrait servir de sortie pour les protéines SNARE car un mécanisme de translocation des pores est peu probable ( cf. discussion).
La libération de protéines SNARE et des α-SNAP déclencherait l'échange de nucléotides et redémarrerait le cycle.
2. Le réassemblage du complexe SNARE dans le complexe 20S serait inhibé, évitant ainsi un gaspillage de temps et d'énergie :
- par les domaines N-terminaux de plusieurs SNARE,
- par séparation physique des protéines SNARE en recyclant les v-SNARE vers la membrane donneuse.
L'une des grandes questions non résolue : les quatre protéines SNARE sont-elles séparées simultanément ou séquentiellement, i.e. sachant que les α-SNAP interagissent principalement sur les VAMP ?
Il semblerait que les α-SNAP ont un rôle supplémentaire dans l'assemblage de complexes SNARE.
- Comment et quand les α-SNAP font la différence entre assemblage et désassemblage ?
- Comment les α-SNAP font la distinction entre les complexes SNARE normaux ou défectueux ?
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